Efecto de seis dietas durante el periodo larval y adulto de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) en condiciones de laboratorio
Barra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
La crianza en el laboratorio del vector Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) transmisor de enfermedades, requiere nutricionalmente dietas con elevada proteína, carbohidratos y bajas en grasa. El objetivo del trabajo fue evaluar y comparar diferentes dietas durante el estadio larval y adulto y su influencia en el tamaño alar. Se compararon 6 dietas, concentrado CIETROP-CC, peces (Nutrafin-NF y Aqua One-AO), perros y gatos (Ricocan-RC y Supercat-SC) y levadura de cerveza-LV. El desarrollo de los estados larvales se midió mediante Kaplan-Meier y la comparación de longitud de alas por la prueba de la Mediana de Mood. Los días de desarrollo de larva a adulto fueron similares en las 6 dietas, con promedio de 13 días. Las larvas alimentadas con LV presentaron menor tasa de supervivencia (88 %) con respecto a las otras dietas (99 %). El tamaño alar de las hembras tuvo un rango 2,81 a 2,93 mm con promedio de 2,88 mm, DS 0,12 y de los machos de 2,18 a 2,28 mm, promedio de 2,23 mm y DS 0,17. Las dietas mostraron un desarrollo larvario satisfactorio; no encontrándose diferencia significativa en la supervivencia larval y desarrollo de larva a adulto (P > 0,05) siendo similar en la dieta CIETROP-CC y las comerciales. El análisis muestra que la dieta de laboratorio presenta respuestas similares con respecto a las otras cinco dietas sometidas a estudio, frente a la tasa de supervivencia y desarrollo de larva a adulto. La elaboración de la dieta permitirá determinar características nutricionales. Los resultados brindan importancia de alimentos comerciales en el desarrollo larvario.
- desarrollo larvario
- dietas
- enfermedades transmitidas vectores
- tamaño corporal
Aguilar-Ramírez, Y. C. (2014). Efecto del alimento con dos niveles proteicos en la crianza semiintensiva de Colossoma macropomun “gamitana” en la comunidad nativa Aawajum Jayais, Chiriaco-Amazonas [Tesis profesional, Universidad Nacional de Trujillo]. https://hdl.handle.net/20.500.14414/5395
Araújo, M d S., Gil, L. H. S., & e-Silva, A. (2012). Larval food quantity affects development time, survival and adult biological traits that influence the vectorial capacity of Anopheles darlingi under laboratory conditions. Malaria Journal, 11(261). https://doi.org/10.1186/1475-2875-11-261 DOI: https://doi.org/10.1186/1475-2875-11-261
Benedict, M. Q., Hunt, C. M., Vella, M. G., Gonzalez, K. M., Dotson, E. M., & Collins, C. M. (2020). Pragmatic selection of larval mosquito diets for insectary rearing of Anopheles gambiae and Aedes aegypti. PLoS ONE, 15(3), e0221838https://doi.org/10.1371/journal.pone.0221838 DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0221838
Bond, J. G., Ramírez-Osorio, A., Marina, C. F., Fernández-Salas, I., Liedo, P., Dor, A., & Williams, T. (2017). Efficiency of two larval diets for mass-rearing of the mosquito Aedes aegypti. PLoS ONE, 12(11), e0187420. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0187420 DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0187420
Carvalho, D. O., Nimmo, D., Naish, N., McKemey, A. R., Gray, P., Wilke, A. B. B., Marrelli, M. T., Virginio, J. F., Alphey, L., & Capurro, M. L. (2014). Mass production of genetically modified Aedes aegypti for field releases in Brazil. Journal of Visualized Experiments, (83), e3579. https://doi.org/10.3791/3579 DOI: https://doi.org/10.3791/3579-v
Consoli, R. A. G. B., & Oliveira, R. L. de. (1994). Principais mosquitos de importância sanitária no Brasil (Primera edición). Editora FIOCRUZ. DOI: https://doi.org/10.7476/9788575412909
Grossman, M. K., Uc-Puc, V., Flores, A. E., Manrique-Saide, P. C., & Vazquez-Prokopec, G. M. (2018). Larval density mediates knockdown resistance to pyrethroid insecticides in adult Aedes aegypti. Parasites & Vectors, 11(282), 1-6. https://doi.org/10.1186/s13071-018-2865-x DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-018-2865-x
Guerra Flores, H. (2006). Cultivando peces amazónicos (2°). Instituto de Investigaciones de la Amazonía Peruana. https://www.iiap.org.pe/upload/Publicacion/PUBL900.pdf
Hasan, M. M., Hernández-Yépez, P. J., de los Angeles Rivera-Cabrera, M., Sarkar, A., dos Santos Costa, A. C., & Essar, M. Y. (2022). Concurrent epidemics of dengue and COVID-19 in Peru: Which way forward? The Lancet Regional Health - Americas, 12, 1-3. https://doi.org/10.1016/j.lana.2022.100277 DOI: https://doi.org/10.1016/j.lana.2022.100277
Jensen, K., Ko, A. E., Schal, C., & Silverman, J. (2016). Insecticide resistance and nutrition interactively shape life-history parameters in German cockroaches. Scientific Reports, 6(1), 28731. https://doi.org/10.1038/srep28731 DOI: https://doi.org/10.1038/srep28731
Khan, I., Farid, A., & Zeb, A. (2013). Development of inexpensive and globally available larval diet for rearing Anopheles stephensi (Diptera: Culicidae) mosquitoes. Parasites & Vectors, 6(90), 1-7. https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-90 DOI: https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-90
Kittayapong, P., Edman, J. D., Harrison, B. A., & Delorme, D. R. (1992). Female body size, parity, and malaria infection of Anopheles maculatus (Diptera: Culicidae) in Peninsular Malaysia. Journal of Medical Entomology, 29(3), 379-383. https://doi.org/10.1093/jmedent/29.3.379 DOI: https://doi.org/10.1093/jmedent/29.3.379
Kivuyo, H. S., Mbazi, P. H., Kisika, D. S., Munga, S., Rumisha, S. F., Urasa, F. M., & Kweka, E. J. (2014). Performance of five food regimes on Anopheles gambiae senso stricto larval rearing to adult emergence in insectary. PLoS ONE, 9(10), e110671. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0110671 DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0110671
Lainhart, W., Bickersmith, S. A., Moreno, M., Tong Rios, C., Vinetz, J. M., & Conn, J. E. (2015). Changes in genetic diversity from field to laboratory during colonization of Anopheles darlingi Root (Diptera: Culicidae). The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 93(5), 998-1001. https://doi.org/10.4269/ajtmh.15-0336 DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.15-0336
Lang, B. J., Idugboe, S., McManus, K., Drury, F., Qureshi, A., & Cator, L. J. (2018). The effect of larval diet on adult survival, swarming activity and copulation success in male Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). Journal of Medical Entomology, 55(1), 29-35. https://doi.org/10.1093/jme/tjx187 DOI: https://doi.org/10.1093/jme/tjx187
Lower-Hernán, M. (2017). Métodos de monitoreo de Aedes aegypti para su control en Entre Ríos: un enfoque hacia un ordenamiento ambiental y un ecosistema urbano saludable. [Tésis especialización, Universidad Tecnológica Nacional]. https://ria.utn.edu.ar/server/api/core/bitstreams/fc2a1163-afb2-4f1e-b714-00fe626ea593/content
Manrique-Saide P, Delfin-Gonzáles H, Parra-Tabla V, Ibañez-Bernal S. (1998). Desarrollo, mortalidad y sobrevivencia de las etapas inmaduras de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) en neumáticos. Revista Biomédica, 9(2), 84-91. https://pesquisa.bvsalud.org/portal/resource/pt/lil-248114
Martinson, V. G., & Strand, M. R. (2021). Diet-microbiota interactions alter mosquito development. Frontiers in Microbiology, 12(650743), 1-16. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.650743 DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.650743
Merritt, R. W., Dadd, R. H., & Walker, E. D. (1992). Feeding Behavior, Natural Food, and Nutritional Relationships of Larval Mosquitoes. Annual Review of Entomology, 37(1), 349-374. https://doi.org/10.1146/annurev.en.37.010192.002025 DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.en.37.010192.002025
Morante-Silva, P., Ruíz-González, C., Atarama-Montero, N., & Andrade-Herrera, K. N. (2019). Efecto del extracto etanólico de Azadirachta indica “Neem” sobre la viabilidad del huevo y larva de Aedes (Stegomyia) aegypti (Diptera: Culicidae) en laboratorio. Revista Peruana de Entomología, 54(1), 1-11.
Moreno, M., Tong, C., Guzmán, M., Chuquiyauri, R., Llanos-Cuentas, A., Rodriguez, H., Gamboa, D., Meister, S., Winzeler, E. A., Maguina, P., Conn, J. E., & Vinetz, J. M. (2014). Infection of laboratory-colonized Anopheles darlingi mosquitoes by Plasmodium vivax. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 90(4), 612-616. https://doi.org/10.4269/ajtmh.13-0708 DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.13-0708
Nasci, R. S., & Mitchell, C. J. (1994). Larval diet, adult size, and susceptibility of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) to infection with Ross River Virus. Journal of Medical Entomology, 31(1), 123-126. https://doi.org/10.1093/jmedent/31.1.123 DOI: https://doi.org/10.1093/jmedent/31.1.123
Nelson, M. (1986). Biología y ecología del Aedes aegypti- OPS (1.a ed.). Organización Panamericana de la Salud. Washington D.C. https://iris.paho.org/handle/10665.2/28513
Pérez Alarcón, M. E. (2019). Eficacia del piryproxifen frente al temephos para el control de Aedes aegypti en condiciones de laboratorio en Lima Perú. [Tesis Doctoral, Universidad Nacional Mayor de San Marcos]. https://hdl.handle.net/20.500.12672/10579
Rivera-Pérez, C., Clifton, M. E., & Noriega, F. G. (2017). How micronutrients influence the physiology of mosquitoes. Current Opinion in Insect Science, 23, 112-117. https://doi.org/10.1016/j.cois.2017.07.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cois.2017.07.002
Sasmita, H. I., Tu, W.-C., Bong, L. J., & Neoh, K. B. (2019). Effects of larval diets and temperature regimes on life history traits, energy reserves and temperature tolerance of male Aedes aegypti (Diptera: Culicidae): optimizing rearing techniques for the sterile insect programmes. Parasites & Vectors, 12(578). https://doi.org/10.1186/s13071-019-3830-z DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-019-3830-z
Schneider, J. R., Morrison, A. C., Astete, H., Scott, T. W., & Mark L. Wilson. (2004). Adult size and distribution of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) associated with larval habitats in Iquitos, Peru. Journal of Medical Entomology, 41(4), 634-642. https://doi.org/10.1603/0022-2585-41.4.634 DOI: https://doi.org/10.1603/0022-2585-41.4.634
Senevirathna, U., Udayanga, L., Ganehiarachchi, M., Hapugoda, M., Ranathunge, T., & Gunawardene, N. S. (2020). Development of an alternative low-cost larval diet for mass rearing of Aedes aegypti mosquitoes In Sri Lanka. BioMed Research International, 2020(1), 1053818. https://doi.org/10.1155/2020/1053818 DOI: https://doi.org/10.1155/2020/1053818
Shapiro, L. L. M., Murdock, C. C., Jacobs, G. R., Thomas, R. J., & Thomas, M. B. (2016). Larval food quantity affects the capacity of adult mosquitoes to transmit human malaria. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 283(1834), 20160298. https://doi.org/10.1098/rspb.2016.0298 DOI: https://doi.org/10.1098/rspb.2016.0298
Singh, K. R. P. & Brown, A. W. A. (1957). Nutritional requirements of Aedes aegypti L. Journal of Insect Physiology, 1(3), 199-220. https://doi.org/10.1016/0022-1910(57)90036-7 DOI: https://doi.org/10.1016/0022-1910(57)90036-7
Souza, R. S., Virginio, F., Riback, T. I. S., Suesdek, L., Barufi, J. B., & Genta, F. A. (2019). Microorganism-based larval diets affect mosquito development, size and nutritional reserves in the yellow fever mosquito Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). Frontiers in Physiology, 10(152), 1-24. https://doi.org/10.3389/fphys.2019.00152 DOI: https://doi.org/10.3389/fphys.2019.00152
Takken, W., Smallegange, R. C., Vigneau, A. J., Johnston, V., Brown, M., Mordue-Luntz, A. J., & Billingsley, P. F. (2013). Larval nutrition differentially affects adult fitness and Plasmodium development in the malaria vectors Anopheles gambiae and Anopheles stephensi. Parasites & Vectors, 6(345), 10. https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-345 DOI: https://doi.org/10.1186/1756-3305-6-345
van Schoor, T., Kelly, E. T., Tam, N., & Attardo, G. M. (2020). Impacts of dietary nutritional composition on larval development and adult body composition in the yellow fever mosquito (Aedes aegypti). Insects, 11(8), 535. https://doi.org/10.3390/insects11080535 DOI: https://doi.org/10.3390/insects11080535
Williams, M., Mayer, S. V., Johnson, W. L., Chen, R., Volkova, E., Vilcarromero, S., Widen, S. G., Wood, T. G., Suarez-Ognio, L., Long, K. C., Hanley, K. A., Morrison, A. C., Vasilakis, N., & Halsey, E. S. (2014). Lineage II of Southeast Asian/American DENV-2 is associated with a severe dengue outbreak in the Peruvian Amazon. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 91(3), 611-620. https://doi.org/10.4269/ajtmh.13-0600 DOI: https://doi.org/10.4269/ajtmh.13-0600
Wohl, M. P., & McMeniman, C. J. (2023). Batch rearing Aedes aegypti. Cold Spring Harbor Protocols, 2023(3), 172-181. https://doi.org/10.1101/pdb.prot108017 DOI: https://doi.org/10.1101/pdb.prot108017
Descargas
Aceptado 2024-11-05
Publicado 2025-03-20
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Los autores conservan los derechos patrimoniales sobre su trabajo y son responsables de las ideas emitidas en ellos. Una vez un manuscrito sea aprobado para publicar se solicita a los autores una licencia de publicación por el término de la protección legal, para todos los territorios que permite el uso, difusión y divulgación de los mismos.